Salta ai contenuti. | Salta alla navigazione

Strumenti personali

TECNOLOGIE BIOCHIMICHE E CELLULARI

Anno accademico e docente
Non hai trovato la Scheda dell'insegnamento riferita a un anno accademico precedente? Ecco come fare >>
English course description
Anno accademico
2022/2023
Docente
ILARIA LAMPRONTI
Crediti formativi
6
Periodo didattico
Secondo Semestre
SSD
BIO/11

Obiettivi formativi

Il corso si prefigge di fornire un’ampia panoramica sulle principali tecnologie biochimiche e cellulari utilizzate in diversi settori della ricerca. Le conoscenze che verranno acquisite riguardano essenzialmente i metodi di estrazione e purificazione delle proteine, le tecniche analitiche per la determinazione della composizione amminoacidica e della concentrazione di molecole biologiche, l’identificazione di proteine di interesse, lo studio di interazioni molecolari, le diverse tipologie di colture cellulari, i metodi di coltivazione, osservazione e analisi, i radioisotopi e le loro principali applicazioni in biologia molecolare e cellulare.

Prerequisiti

È necessario aver acquisito le conoscenze di base di chimica, biochimica e biologia molecolare.
Nessuna propedeuticità.

Contenuti del corso

-Colture cellulari: isolamento di cellule da tessuti e loro crescita in coltura (2 ore)
-Principi di base per lavorare con cellule e tessuti: visualizzazione delle cellule e analisi di cellule e molecole (trattamento e analisi di colture di cellule immortalizzate o di colture primarie: analisi del ciclo vitale e dell’apoptosi; analisi biomoleclari) (6 ore).
-Biologia molecolare del cancro e tecnologie applicate (4 ore)
-Metodi per la purificazione proteine: tecniche di separazione (estrazione di proteine da fonte biologica, metodi di frazionamento di miscele proteiche, tecniche cromatografiche); tecniche di analisi (elettroforesi, dosaggi quantitativi, tecniche immunochimiche) (10 ore).
-Proteomica: Peptide Mass Fingerprinting (PMF), dall’analisi di gel bidimensionali all’identificazione di proteine di interesse (4 ore)
-Spettrometria di Massa (MS) per l’identificazione di proteine, per l’analisi del proteoma e per lo studio di proteine quali possibili marcatori diagnostici e target farmacologici (marcatori tumorali, dell’infiammazione, ecc…) (6 ore).
-Metodi biochimici per la quantificazione e analisi delle interazioni molecolari (SPR, ELISA e Luminex) (4 ore).
-I radioisotopi: EMSA e RIA (2 ore).
-Trascrittomica: tecnologie e applicazioni (analisi dell’espressione genica, dalla PCR classica e digital all’utilizzo di microarrays) (4 ore)
-Genomica: tecnologie e applicazioni (sequenziamento genico, diagnosi di malattie genetiche e cenni sull’editing del genoma) (6 ore)
Le ore di lezione riportate per ciascun argomento sono indicative.

Metodi didattici

Il corso è realizzato grazie all'utilizzo di lezioni registrate e documenti in formato pdf, caricati settimanalmente in "Classroom".

Modalità di verifica dell'apprendimento

Prova scritta, con domande sia a risposta multipla che a risposta aperta.

Testi di riferimento

-Metodologie Biochimiche, Maria Carmela Bonaccorsi, Roberto Contestabile, Martino Di Salvo. Casa Editrice Ambrosiana. Distribuzione esclusiva Zanichelli.
-Biochimica Applicata, ¿Monica Stoppini, Vittorio Bellotti. EdiSES.
-Biologia molecolare della cellula, Bruce Alberts, Alexander Johnson, Julian Lewis, Martin Raff, Keith Roberts, Peter Walter, Zanichelli Editore.